Link to home

The Plant Health Instructor

Volume: 23
Year: 2023
Article Type: Plant Disease Profiles

​​Склеротиниоз Подсолнечника (Белая гниль)

Mathew, F., Harveson, R., Block, C., Gulya, T., Ryley, M., Thompson, S., and Markell, S. 2020. Sclerotinia sclerotiorum ​Diseases of Sunflower (White mold). Plant Health Instructor. DOI: 10.1094/PHI-I-2020-1201-01 ​

Translated by: Oleksandra Rachynska1 and Andrew E. Sa​thof​f​1​ 

1Department of Biology, 820 N. Washington Ave., Dakota State University, Madison, SD 57042, U.S.A.

Date Accepted: 20 Oct 2023
Date Published: 19 Dec 2023

Keywords: Fungal Pathogens, Disease Control and Pest Management




​Болезни, вызванные Sclerotinia sclerotiorum (Lib. ) de Bary, являются одними из основных факторов, ограничивающих выращивания подсолнечников (Helianthus annuus L. ) в мире (Harveson и соавт. 2016; Rashid и соавт. 2016). Гриб S. sclerotiorum также известен тем, что вызывет болезни многих сельскохозяйственных культур, включая сою (Glycine max L.), рапс (Brassica napus L.) и широколиственные сорняки. Пропагулой S. sclerotiorum является склероций, который имеет два механизма прорастания: карпогенный и мицелиогенный, позволяющие грибу быть воздушно-капельным и почвенным возбудителем соответсвенно. Существует три различных заболевания подсолнечников, вызываемых S. sclerotiorum: (1) склеротинозная корневая гниль, базальная черешковая гниль и увядание; (2) склеротиниозная стеблева гниль и (3) склеротиниозная корзинная гниль и среднечерешковая гниль. Развитию этих заболеваний способствуют температура 30°C или ниже, продолжительные влажные условия (например дождь, туман, роса, орошение) и влажная почва (Markell и соавт. 2015). Воздействие S. sclerotiorum на урожайность подсолнечника зависит от стадии роста культуры на момент заражения, агроприемов, условий окружающей среды и типа заболевания (Gulya и соавт. 2019; Rothmann and McLaren 2018; Harveson и соавт. 2016; Rashid и соавт. 2016; Harveson 2011).​​

​Симптомы и признаки

Cклеротинозная корневая гниль, базальная черешковая гниль и увядание: Первым наземным симптомом склеротинозной корневой гнили, базальной черешковой гнили и увядания является увядание растений подсолнечника до или во время цветения, при этом увядшие растения часто встречаются группами. Гриб-возбудитель S. sclerotiorum проникает сквозь корни растений подсолнечника и может заражать соседние растения при контакте с корнями. Со временем у основания растений появляются светло-коричневые, на вид пропитанные водой поражения (рис. 1), которые могут окружать стебель. По мере развития болезни стебель растения кажется обесцвеченным, уменьшенным и имеет гнилую сердцевину. Сильный ветер в поле может легко спровоцировать стеблевое полегание инфицированных растений (рис. 2). Промежуток времени между увяданием зараженных растений и их гибелью обычно составляет от четырех до семи дней. Черные склероции (диаметром от 1 до 2 мм) могут образовываться внутри, а иногда и снаружи стебля. Наличие склероциев относительно крупных размеров помогает отличить склеротиниозной базальную черешковую гниль и увядание от других стеблевых заболеваний, таких как вертициллезное увядание и угольная гниль (Markell и соавт. 2015).​


Рисунок 1. Поражение, вызванное Sclerotinia sclerotiorum у основания стебля​​

Рисунок 2. Полегание от склеротиниозного увядания и прикорневой гнили​​​

Стеблевая склеротиниозная гниль: Симптомы могут появиться в любой период времени после прорастаание саженца подсолнечника, но болезнь чаще всего возникает в середине или конце вегетационного периода культуры. По мере прогрессирования болезни на растении могут появляться вторичные симптомы, к которым относятся увядание, обесцвечивание и поникание стебля. Сердцевина стебля расположенная под очагами поражения, часто содержит мицелиальный рост и обильные черные склероции (рис. 3). Склероции также могут быть видны снаружи стебля. По мере прогрессирования заболевания стебель может поникать и ломаться, при этом будет видна только сосудистая ткань растения (рис. 4). Симптомы стеблевой клеротиниозной гнили можно спутать с симптомами фомопсиза (рака стеблей). Участки, пораженные фомопсизом, имеют цвет от светлого до темно-коричневого в то время как подсолнечники, пораженные стеблевой склеротиниозной гнилью, имеют сформировавшиеся склероции внутри и снаружи стебля (Mathew и соавт. 2018).

Рисунок 3. Склероций внутри стебля подсолнечника, вызванный Sclerotinia sclerotiorum​
Рисунок 4. Стебли имеют поникший вид из-за заражения склеротиниозом​
Cклеротиниозная корзинная гниль и среднечерешковая гниль: Это заболевание может проявляться до или после цветения. Симптомы склеротиниозной корзинной гнили включают темные, на вид пропитанные водой поражения на обратной стороне корзинок подсолнуха или наличие белого мицелиального нароста, покрывающего развивающиеся семена в корзинке (рис. 5). По мере развития болезни S. sclerotiorum провоцирует загнивание внутренней части корзинки и крупные склероции заполняют корзинку ниже семенного слоя и вокруг семян. По мере прогрессирования заболевания корзинка подсолнечника поникает и разлагается, оставляя после себя крупные склероции (12 см и более в диаметре). Корзинка подсолнечника напоминает соломенный веник (рис. 6 и рис. 7) и хорошо заметна на дальнем расстоянии в поле. Симптомы склеротиниозной корзинной гнили можно спутать с ризопусной гнилью корзинок (Markell и соавт.  2015). Однако на корзинках подсолнечника, пораженных ризопусной гнилью, будут заметны серые нитевидные мицелиальные тяжи без склероций (рис. 8).

Рисунок 5. Белый мицелиальный нарост и склероции, вызванные Sclerotinia sclerotiorum на корзинке подсолнечника​
Рисунок 6. Корзинка подсолнечника, похожая на соломенный веник после заражения Sclerotinia sclerotiorum ​
​​​Рисунок 7.​
Рисунок 8. Кочан подсолнечника, пораженный склеротиниевой гнилью, может напоминать ризопусную гниль.​

Sclerotinia sclerotiorum зимует в виде склероциев, находясь в почве или растительных остатках, что позволяет грибу выживать от трех до пяти лет. Склероции могут быть различной формы, размером от 2 до 5 мм в диаметре и до 2,5 см в длину (Рис. 9; Heffer Link and Johnson 2007). В зависимости от условий окружающей среды склероции могут прорастать карпогенно, образуя апотеции (и аскоспоры) и заражая надземные части растений, или мицелиогенно, непосредственно заражая корни растений подсолнечника (Bardin and Huang 2001; Bolton и соавт. 2006).


Рисунок 9. Склероций, продуцируемый Sclerotinia sclerotiorum, может варьироваться по форме и размеру​

При карпогенном прорастании склероции гриба, лежащие на поверхности почвы или в пределах 2 см от нее, прорастают, образуя чашевидные структуры, называемые апотециями (Harveson 2011; Heffer Link and Johnson 2007). Формированию апотециев способствуют температура воздуха от 10 до 25°C, высокая относительная влажность (из-за плотного покрова) и высокая влажность почвы (вызванная орошением или дождем) в течение одной-двух недель (Bolton и соавт. 2006; Clarkson и соавт. 2004). Апотеции состоят из ножки (длиной от 20 до 80 мм) и плоского или вогнутого светло-коричневого цветоложа (диаметром от 2 до 10 мм), которое поддерживает ткань аска, известную как гимениум (Bolton и соавт. 2006). Аски выделяют эллипсовидные аскоспоры (от 8 до 15 x 5 до 8 мкм; Brooks, 1953) при внезапном снижении относительной влажности или нарушении покоя апотеция. Аскоспоры представляют собой одиночные гиалиновые клетки с тонкими клеточными оболочками. Для прорастания этим спорам требуется температурный режим от 20 до 25˚C, влажность листьев в течение 48–72 часов (например роса, дождь) и источник питательных веществ (например, отмершие или стареющие ткани растений или выделения из нектарников) (Rothmann and McLaren 2018; Abawi and Grogan 1979). Аскоспоры выживают около двух недель после выделения из апотеция.

При мицелиогенном прорастании склероции, продуцируемые S. sclerotiorum , прорастают с образованием гиф, которые могут напрямую атаковать подсолнечники (Harveson 2011). Прорастание гиф склероция происходит, когда почва влажная (водоудерживающая способность от 30 до 100%) и прохладная (температура от 12 до 24 °C) после дождя или орошения (Rothmann and McLaren 2018; Heffer Link and Johnson 2007). Заражение растений после прорастания гиф склероциев позволяет грибу проникать в боковые корни, стержневой корень, стебель, вызывая склеротинозную корневая гниль, базальную черешковую гниль и увядание.

Цикл болезни и эпидемиология

Cклеротинозная корневая гниль, базальная черешковая гниль и увядание: Sclerotinia sclerotiorum может заразить подсолнечник через корни. В начале лета, особенно на полях, на которых ранее наблюдалось белая гниль, склероции могут прорастать с образованием белого мицелия при контакте с корнями растений подсолнечника. Гриб проникает в боковые корни, а затем в стержневой корень, вызывая загнивание корневой системы. Контакт между инфицированными корнями и корнями соседних здоровых растений позволяет Sclerotinia sclerotiorum распространяться от растения к растению. Гриб прорастает в стебель через корни, и растение увядает. По мере прогрессирования болезни в загнивающем стебле и корнях образуются склероции. Эти склероции попадают в почву при полягании растений или во время сбора урожая и могут послужить источником инокулята для следующей восприимчивой культуры. Важным фактором, который может повлиять на заболеваемость, является доля инокулятов склероциев, присутствующих в почве. Чем выше доля инокулятов склероциев, тем дольше поле будет оставаться зараженным. Например, исследование Холли и Нельсона Holley and Nelson) (1986) показало, что доля инокулята менее одного склероция на 800 см3 сухой почвы может привести к средней 40%-ой заболеваемости склеротинозом на растениях подсолнечника.

Стеблевая склеротиниозная гниль: Апотеции, продуцируемые S. sclerotiorum, можно наблюдать на поле подсолнечника только после образования растительного полога, а аскоспоры, продуцируемые апотециями, могут появиться изнутри подсолнечного поля. Кроме того, аскоспоры могут переноситься с соседних полей, где могут присутствовать апотеции. Эти споры попадают на листья и черешки растений подсолнечника. При наличии свободной влаги и питательных веществ аскоспоры прорастают, поражают листья и черешки и переходят на стебель, вызывая стеблевую склеротиниозную гниль (Harveson и соавт. 2016; Harveson 2011). 

Cклеротиниозная корзинная гниль и среднечерешковая гниль: Аскоспоры это инфекционные сеянцы которые требуют листовую влажность и питательные вещества для заражения. Так же, как и стеблевая гниль, аскоспоры используют мертвые соцветия и пыльцу в качестве питательной основы для прорастания. Эти споры проникают в цветоложе и загнивают всю головку растения. Sclerotinia sclerotiorum может инфицировать семена подсолнечника и существовать в виде мицелия в семенной оболочке, но инфицированные семена имеют меньшее влияние на развитие болезни (Harveson и соавт. 2016; Harveson 2011). 

​​

Управления Заболеваниями 

Обработка почвы: Практика беспахотной обработки земли может усилить прорастание склероций, присутствующих на поверхности почвы. Однако сочетание беспахотной обработки земли с использованием культуры, которая не является распространителем данного заболевания, может уменьшить количество склероциев, которые могут заразить урожай в последующем сезоне. Напротив, глубокая обработка почвы может помочь уменьшить количество склероциев, присутствующих на поверхности почвы; однако вспашка в последующий сезон может вернуть погребенные склероции на поверхность почвы.​

Севооборот: В случае этих трех заболеваний, перерыв в севообороте от трех до пяти лет с теми культурами, которые не являются распространителями данного заболевания [например, пшеница (Triticum L.), сорго (Sorghum bicolor (L.) Moench) и кукуруза (Zea mays L.], может уменьшить количество склероциев (Harveson 2011; Heffer Link and Johnson 2007). При отсутствии подсолнечника (или других восприимчивых культур) склероции могут прорастать, но без заражения культуры, которая является распространителем данного заболевания, новые склероции не образуются, и их количество постепенно снижается. Однако как только Sclerotinia sclerotiorum приживется в поле, севооборот может оказаться неэффективным, поскольку склероции способны сохраняться в течение многих лет на зараженном участке.

Орошение: Следует избегать орошения подсолнечника на полевых почвах с высокой водоудерживающей способностью, особенно во время цветения, чтобы предотвратить карпогенное прорастание склероциев (Weber 2017; Scherer 2007).

Плотность посадки растений и расстояние между рядами: для борьбы с болезнями, вызываемыми Sclerotinia sclerotiorum, в случае большинства культур, включая подсолнечник, рекомендуется минимальная плотность посадки с широкими рядами (Harveson и соавт. 2016; Zimmer and Hoes 1978).

Азотные удобрения: Следует избегать чрезмерных доз азота на полях подсолнечника, так как избыток азота может способствовать формированию плотного покрова и создавать микроклимат для развития болезней (Weber 2017; Harveson и соавт. 2016). 

Борьба с сорняками: Широколистные сорняки, которые могут присутствовать на поле подсолнечника, могут быть носителями Sclerotinia sclerotiorum. К этим сорнякам относятся канадский чертополох (Cirsium arvense (L.) Scop.), топинамбур (H. tuberosus L.), марь (Chenopodium album L.), паслен (Solanaceae Juss.), амарант (Amaranthus L.), амброзия (Ambrosia L.), соевые бобы, просфорник (Abutilon theophrasti Medik.), вика (Vicia L.) и дикий подсолнечник (H. annuus) (Heffer Link and Johnson 2007). Важно бороться с этими сорняками, поскольку они способствуют выживанию и распространению инокулята.

Биологический контроль: Существуют микопаразиты, такие как Coniothryium minitans Campbell, которые могут непосредственно атаковать склероции, продуцируемые Sclerotinia sclerotiorum. Применение C. minitans (Contans WG, Bayer CropScience, Research Triangle Park, NC) непосредственно в почву (в зависимости от предпосевной или послеуборочной обработки урожая) может способствовать колонизации грибка и уничтожению склероций (Bradley и соавт. 2007). Кроме того, применение C. minitans после сбора урожая, особенно после тяжелой формы болезни плода подсолнечника, может помочь уменьшить количество и выживаемость склероциев (Weber 2017). Однако эффективная и экономичная борьба с болезнями, вызываемыми Sclerotinia sclerotiorum, с использованием C. minitans в полевых условиях еще не создана (Harveson и соавт. 2016). Кроме того, не рекомендуется немедленная посадка восприимчивой культуры [например, соевые бобы, рапс, картофель (Solanum tuberosum L.)] на поле, в котором раннее наблюдались симптомы белой гнили. 

Химический контроль: фунгициды (наземные, воздушные и/или применяемые через систему орошения) используются в США для борьбы с болезнями. В настоящее время фермеры, выращивающие подсолнечники, для борьбы с этими болезнями ограничиваются фунгицидами с активными ингредиентами групп FRAC 3 (например, метконазол и тебуконазол), 7 (например, боскалид, флуопирам и пентиопирад) и/или 11 (например, азоксистробин и пираклостробин). Обработка семян, содержащая активные ингредиенты группы FRAC 11 (например, пираклостробин) может защитить семена подсолнечника от склеротиниоза/базальной черешковой гнили на ранней стадии роста рассады. В случае склеротиниозной корзинной гнили и среднечерешковой гнили маркируются фунгициды, которые содержат активные ингредиенты группы 7 FRAC (например, пентиопирад). Однако результаты данных об эффективности фунгицидов либо недоступны, либо не совпадают по датам и/или локациям (Seiler и соавт. 2017). 

Генетическая устойчивость: В культивируемом подсолнечнике не было выявлено основных генов, которые могут обеспечить полную устойчивость к S. sclerotiorum (Seiler и соавт. 2017). Генетические механизмы устойчивости к болезням, которые могут быть вызваны S. sclerotiorum, носят количественный характер, что усложняет работу по выведению устойчивых сортов. В последнее десятилетие были достигнуты успехи в исследованиях по выявлению источников устойчивости к S. sclerotiorum у подсолнечника, в частности, к склеротиниозной базальной черешковой гнили и корзинной гнили. Например, Block и соавт. (2010, 2009) протестировали 460 образцов, полученных из 14-ти однолетних диких видов Helianthus, на устойчивость к склеротиниозной базальной черешковой гнили и выявили, что H. argophyllus Torr. и Gray), H. debilis, H. praecox Engelm. и Gray и H. petiolaris Engelm. и Gray являются потенциальными источниками сопротивления. Talukder и соавт. (2014) протестировали 260 новых видов интродукции растений (включая инбредные линии USDA-ARS) в течение нескольких лет в штатах Миннесота, Северная Дакота и Южная Дакота (США). Два интродуцированных вида растений, PI531389 и PI531366, были определены как значительно устойчивые к склеротиниозной базальной черешковой гнили и корзинной гнили по сравнению с контрольной группой растений. Однако заболеваемость корзинной гнилью на этих интродуцированных растениях отрицательно коррелировала с заболеваемостью базальной черешковой гнилью, что указывает на то, что гены, усиливающие невосприимчивость к этим двум заболеваниям, могут разниться между собой (Talukder и соавт. 2014). Seiler и соавт. (2017) идентифицировали девять образцов масличных культур из Совета по сельскохозяйственным исследованиям в Южной Африке (Институт зерновых культур, Почефструм, Южная Африка), у которых уровень заболеваемости базальной черешковой гнилью был меньше или равен уровню заболеваемости умеренно устойчивых гибридов масличных культур. Talukder и соавт. (2019) внедрили гены, придающие устойчивость к склеротиниозной базальной черешковой гнили, из H. praecox в культурный подсолнечник. Что касается стеблевой склеротиниозной гнили, то со времени последнего исследования Miller и Gulya (1999), которые разработали поддерживающие и восстановительные линии масличных культур с устойчивостью к болезням, не было достигнуто никакого прогресса в исследованиях по повышению уровня устойчивости культурного подсолнечника к болезням.​

Значимость 

Болезни подсолничника, провоцируемые S. sclerotiorum, такие как склеротинозная корневая гниль, базальная черешковая гниль и увядание; склеротиниозная стеблева гниль; склеротиниозная корзинная гниль и среднечерешковая гниль приводят к потери урожая в США и других странах-производителях подсолнечника. Например, потери урожая на коммерческих полях подсолнечника от склеротиниозной корзинной гнили варьировались от 10 до 20% (Gulya и соавт., 2019) и от 5 до 70% от склеротиниозного увядания/базальной черешковой гнили (Kolte, 1985). Помимо негативного влияния на урожайность, склеротиниозная корзинная гниль может также неблагоприятно воздействывать на качество семян, снижая содержание масла в семенах на 10–15% и повышая содержание свободных жирных кислот, что приводит к прогорканию масла (Gulya и соавт. 2019). Борьба с болезнями, вызываемыми S. sclerotiorum, ограничивается севооборотом с культурами, которые не являются распространителями данного заболевания (такими как кукуруза, пшеница), выбором устойчивых гибридов (если таковые имеются), надлежащим режимом орошения, борьбой с сорняками и биологическим контролем. На данный момент для борьбы с упомянутыми заболеваниями подсолнечника зарегистрированы три группы фунгицидов, но данные об эффективности отсутствуют или не совпадают по датам и/или локациям. Таким образом, выведение гибридов с частичной устойчивостью к Sclerotinia sclerotiorum является наиболее эффективным вариантом борьбы с болезнями вызываемыми этим грибком. Однако отсутствие эффективных источников устойчивости у культурного подсолнечника и количественный характер устойчивости к болезням препятствовали прогрессу в создании гибридов подсолнечника, устойчивых к S. sclerotiorum . ​​​

References

Abawi, G. S., and Grogan, R. G. 1979. Epidemiology of diseases caused by Sclerotinia species. Phytopathology 169: 899-904.Bardin, S.D., and Huang, H.C. 2001. Research on biology and control of Sclerotinia diseases in Canada. Can. J. Plant Pathol. 23: 88-98.​Bolton, M. D., Thomma, B., and Nelson, B. D. 2006. Sclerotinia sclerotiorum (Lib.) de Bary: biology and molecular traits of a cosmopolitan pathogen. Mol. Plant Patho. 7: 1-16.Block, C. C., Rashid, K. Y., and Gulya, T. J. 2016. Sclerotinia root rot, basal stalk rot, and wilt. Pages 57-59 in: Compendium of Sunflower Diseases and Pests. R. M. Harveson, S. G. Markell, C. C. Block, and T. G. Gulya, eds. American Phytopathological Society, St. Paul, MN.Block, C. C., Marek, L. F., and Gulya, T. J. 2010. Evaluation of wild Helianthus species for resistance to Sclerotinia stalk rot. Proceedings of the 8th Annual Sclerotinia Initiative Meeting, Bloomington, MN, USA, January 20-22, 2010.Block, C. C., Marek, L. F., and Gulya, T. J. 2009. Evaluation of wild Helianthus species for resistance to Sclerotinia stalk rot. Proceedings of the 7th Annual Sclerotinia Initiative Meeting, Bloomington, MN, USA, January 21-23, 2009.Bradley, C., Markell, S., and Gulya, T. 2007. Irrigation management. Pages 54-77 in: Sunflower Production. D. R. Berglund, ed. North Dakota State University Extension, Fargo, ND, USA.Brooks, F. T. 1953. Plant Diseases. Oxford Univ. Press, London, UK.Clarkson, J. P., Phelps, K., Whipps, J. M., Young, C.S., Smith, J. A., and Watling, M. 2004. Forecasting Sclerotinia disease on lettuce: toward developing a prediction model for carpogenic germination of sclerotia. Phytopathology, 94: 268-279.Gulya, T., Harveson, R., Mathew, F., Block, C., Thompson, S., Kandel, H., Berglund, D., Sandbakken, J., Kleingartner, L., and Markell, S. 2019. Comprehensive disease survey of U.S. sunflower: disease trends, research priorities and unanticipated impacts. Plant Dis. 103: 601-618.Hartill, W. F. T., and Underhill, A. P. 1976. 'Puffing' in Sclerotinia sclerotiorum and S. minor. New Zeal. J. Bot. 14: 355-358Harveson, R. M., Markell, S. G., Block, C. C., and Gulya, T. J. 2016. Compendium of Sunflower Diseases, 1st ed. American Phytopathological Society, St. Paul, MN, USA.Harveson, R. M. 2011. Sclerotinia diseases of sunflower in Nebraska. NebGuide G2107, University of Nebraska Cooperative Extension, Lincoln, NE, USA. http://extensionpublications.unl.edu/assets/pdf/g2107.pdf Heffer Link, V., and Johnson, K. B. 2007. White Mold. The Plant Health Instructor. DOI: 10.1094/PHI-I-2007-0809-01. Updated 2012.Holley, R. C., and Nelson, B. D. 1986. Effect of plant population and inoculum density on incidence of Sclerotinia wilt of sunflower. Phytopathology 76: 71-74.Huang, H. C., and Hoes, J. A. 1980. Importance of plant spacing and sclerotial position to development of Sclerotinia wilt of sunflower. Plant Dis. 64: 81-84.Kolte, S. J. 1985. Diseases of annual edible oilseed crops volume III sunflower, safflower, and nigerseed diseases. CRC Press, Boca Raton, FL, USA.Markell, S., Harveson, R., Block, C., and Gulya, T. 2015. Sunflower Disease Diagnostic Series. Publication PP1727. North Dakota State University Cooperative Extension Service, Fargo, ND, USA.Masirevic, S., and Gulya, T. J. 1992. Sclerotinia and Phomopsis – two devastating sunflower pathogens. Field Crop Res. 30: 271-300.Mathew, F., Harveson, R., Gulya, T., Thompson, S., Block, C., and Markell, S. 2018. Phomopsis stem canker of sunflower. Plant Health Instructor. DOI: 10.1094/PHI-I-2018-1103-01.McLaren, D. L., Rimmer, S. R., and Huang, H. C. 1988. Survey of Sclerotinia wilt and head rot of sunflower in southern Alberta, 1987. Can. Plant Dis. Surv. 68: 126-127.Miller J. F., and Gulya T. J. 1999. Registration of eight Sclerotinia-tolerant sunflower germplasm lines. Crop Sci. 39: 301-302.Rashid, K. Y., Block, C. C., and Gulya, T. J. 2016. Sclerotinia head rot and midstalk rot. Pages 51-55 in: Compendium of Sunflower Diseases and Insects. R. M. Harveson, S. M. Markell, C. C. Block, and T. J. Gulya, eds. The American Phytopathological Society, St. Paul, Minnesota, USA. Pp: 51-55. Rothmann, L.A., and McLaren, N. W. 2018. Sclerotinia sclerotiorum disease prediction: A review and potential applications in South Africa. S. Afr. J. Sci. 2018; 114​, Art. #2017-0155, 9 pages. http://dx.doi.org/10.17159/sajs.2018/20170155.Scherer, T. 2007. Irrigation management. Pages 16-17 in: Sunflower Production​. D. R. Berglund, ed. North Dakota State University Extension, Fargo, ND, USA.Sedun, F. S., and Brown, J. F. 1989. Comparison of three methods to assess resistance in sunflower to basal stem rot caused by Sclerotinia sclerotiorum and S. minor. Plant Dis. 73: 52-55.Seiler, G., Misar, C. G., Gulya, T. J., Underwood, W. R., Flett, B. C., Gilley, M., and Markell, S. G. 2017. Identification of novel sources of resistance to Sclerotinia basal stalk rot in South African sunflower germplasm. Plant Health Prog. 18: 87-90.Talukder, Z. I., Long, Y., Seiler, G. J., Underwood, W., and Qi, L. 2019. Introgression and monitoring of wild Helianthus praecox alien segments associated with Sclerotinia basal stalk rot resistance in sunflower using genotyping-by-sequencing. PLOS ONE 14: e0213065.Talukder, Z. I., Hulke, B. S., Marek, L. F., and Gulya, T. J. 2014. Sources of resistance to sunflower diseases in a global collection of domesticated USDA Plant Introductions. Crop Sci. 54: 694-705.Weber, J. M. 2017. Management of white mold in hybrid sunflower seed crops in the Columbina basin of Central Washington. MS Thesis, Washington State University, Pullman, WA, USA.

Zimmer, D. E., and Hoes, J. A. 1978. Diseases. In: Carter, J. F. (Ed.). Sunflower science and technology. Madison: American Society of Agronomy. p. 225-262. ​